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方案介绍

【微胶囊案例】液滴微流控制备尺寸可控、高单分散GMA/ETPTA微胶囊

实验背景

具有核壳结构的微胶囊允许将各种活性材料封装在核内,以隔离、固定、稳定和保护核心活性成分免受周围环境的影响。同时可作为控释系统以输送药物、香料、气味、催化剂等,应用于几乎所有工业领域,从制药行业、农用化学品、食品行业、化妆品行业到纺织品行业等。

微胶囊通常需要固化,才能具有良好的稳定性,能够保护芯材不受外界环境的影响,并在需要时释放芯材。微胶囊常见的固化方式包括溶剂挥发或沉淀(用于PLGA胶囊)、离子交联(用于海藻酸盐胶囊)或化学交联(用于壳聚糖胶囊)、热或光引发聚合等。光引发聚合(光固化)是最普遍的方法之一,因为它的响应时间快,可以在几秒钟内引发聚合,可以精确控制固化区域,减少对周围环境的影响。

微胶囊的制备方法通常有乳液聚合、层层组装、相分离、溶胶凝胶封装、喷雾干燥等方法[1-3]。这些方法通常涉及复杂的工艺和设备,并且在控制微胶囊尺寸和实现单分散性方面面临局限性。

ü与传统方法不同,微流控技术可实现对微尺度流体的精确操控,利用该技术可以制备高度单分散、尺寸和结构高度可控的微液滴。我们基于液滴微流控技术,提供一种微液滴紫外光固化装置,利用光固化微胶囊制备套装,为制备尺寸可控且直径和外壳均一的微胶囊提供解决方案,满足人们对药物、自修复材料、催化剂、染料、相变材料等活性成分的封装。

材料与仪器

1)实验材料

内相:3%(wt/wt %)PVA(Mw=67,000)水溶液+0.2% 蓝色染料台盼蓝;

中间相:采用甲基丙烯酸缩水甘油酯(GMA)、乙氧基化三羟甲基丙烷三丙烯酸酯(ETPTA)和 十二醇的三元混合物,其中含有 1 wt% 2,2-二甲氧基-1,2-二苯基乙酮和1 wt% Span 80GMAETPTA和十二醇醇的混合比例设置为重量比27:41:30

外相:5%(wt/wt %)PVA(Mw=67,000)水溶液;

收集液:同连续相;

2)实验仪器

芯片:DUAL型号3D共轴毛细管液滴微流控芯片

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液滴微流控工作站:DMF-3G
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操作步骤

1)微液滴的制备

  • 将一定量的内相、中间相、外相溶液分别抽取到10毫升规格的注射器中,并将其固定在液滴微流控工作站(DMF-3G)的注射泵上。

  • 使用特氟龙(PTFE)导管,一端通过鲁尔接头与各注射器连接,确保连接牢固无泄漏。另一端通过倒锥接头与微流控芯片(DUAL芯片)进液口连接。

  • 将特氟龙导管通过倒锥接头与芯片的收集口连接,作为收集管使用,以便收集生成的乳液液滴。

  • 取适量收集相至收集瓶中,并确保收集管的出液端浸没在收集相中,以便液滴能够顺利进入收集相。

  • 在工作站上设定各相相的流速。首先启动外相溶液,确保通道完全充满。

  • 外相稳定后,启动中间相溶液,形成单乳液液滴。

  • 单乳液液滴形成稳定后,再开启内相溶液。

  • 通过调节三相溶液的流速,控制双乳液液滴的尺寸和内核数量。

  • 收集到的液滴可用于后续分析和处理,例如测量粒径分布和固化。


2)微液滴的紫外(UV)固化

微液滴由出口处流出,在外界给予强度为1000 mW/cm2 紫外光照射(1 cm 照射距离),使其光交联。最后,获得直径和外壳均一的高度单分散微胶囊

数据结论

image-(1).jpg

1. DUAL液滴微流控芯片中双乳液液滴的实时生成,内、中、外相的流速分别为122050 μl/min。在相中添加蓝色染料以增加对比度。图中比例尺为200 μm

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2. 紫外光照射之前(左)和照射后(右)GMA/ETPTA双乳液液滴的光学显微镜图,比例尺为200 μm

前沿拓展

由液体核心和致密固体膜组成的致密的膜不允许材料扩散通过它,从而将微胶囊的内部与周围环境完全隔离,这种不渗透膜可用于自修复剂和显示颜料的微囊化[4-6]。致密膜可以进一步功能化,仅在特定环境下降解或破裂[7-11]。这种智能半渗透性微胶囊具有高机械稳定性和耐化学性,以及可控的渗透性和高封装效率,提供了一种多功能技术,具有在环境监测、碳捕获、控制释放系统和生物修复等多个环境应用中的潜力。

应用前景:

碳捕获:使用半透性微胶囊可以填充液态溶剂,如碳酸钠,允许与周围环境交换CO2和H2O[6]。

控制释放系统:可以用来保护并逐渐释放催化剂或营养物质,这在各种环境修复过程中都是有益的。

微吸湿器:利用微胶囊封装液体干燥剂,例如CaCl2和LiCl,可作为除湿用的微吸收器[12]。


参考文献

[1] Wang, Y.; Angelatos, A.S.; Caruso, F. Template Synthesis of Nanostructured Materials via Layer-by-Layer Assembly. Chem. Mater. 2008, 20, 848–858.

[2] Atkin, R.; Davies, P.; Hardy, J.; Vincent, B. Preparation of aqueous core/polymer shell microcapsules by internal phase separation. Macromolecules 2004, 37, 7979–7985.

[3] Kwon, O.S.; Jang, J.; Bae, J. A Review of Fabrication Methods and Applications of Novel Tailored Microcapsules. Curr. Org. Chem. 2013, 17, 3–13.

[4] Hamonangan W M, Lee S, Choi Y H, et al. Osmosis-mediated microfluidic production of submillimeter-sized capsules with an ultrathin shell for cosmetic applications. ACS Applied Materials & Interfaces, 2022, 14(16): 18159-18169.

[5] Liu H, Piper J A, Li M. Rapid, simple, and inexpensive spatial patterning of wettability in microfluidic devices for double emulsion generation. Analytical Chemistry, 2021, 93(31): 10955-10965.

[6] Zhao Y, Moshtaghibana S, Zhu T, et al. Microfluidic fabrication of novel polymeric core‐shell microcapsules for storage of CO2 solvents and organic chelating agents. Journal of Polymer Science, 2022, 60(11): 1727-1740.

[7] Ding Y, Yan Y, Wang H, et al. Preparation of Hollow Cu and CuO x Microspheres with a Hierarchical Structure for Heterogeneous Catalysis. ACS applied materials & interfaces, 2018, 10(48): 41793-41801.

[8] Lee S, Lee T Y, Kim D J, et al. Osmotic-stress-mediated control of membrane permeability of polymeric microcapsules. Chemistry of Materials, 2018, 30(20): 7211-7220.

[9] Oh J, Kim B, Lee S, et al. Semipermeable microcapsules with a block-polymer-templated nanoporous membrane. Chemistry of Materials, 2018, 30(1): 273-279.

[10] Loiseau E, Rühs P A, Hauser A, et al. Strong Dual-Compartment Microcapsules Loaded with High Cargo Contents. Langmuir, 2018, 34(1): 205-212.

[11] Kim B, Jeon T Y, Oh Y K, et al. Microfluidic production of semipermeable microcapsules by polymerization-induced phase separation. Langmuir, 2015, 31(22): 6027-6034.

[12] Elsafi A M, Bahrami M. A novel spherical micro-absorber for dehumidification systems. International Journal of Refrigeration, 2024, 157: 73-85.